Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре - Бухало А.С.
ISBN 5-12-000267-6
Скачать (прямая ссылка):
nus 252 --- --- L. pyrifonne415 3,8 37,6 333 _
Oudemansiella Sderodermatales
brunneomargina- Sderodermataceae
ta 260 9,7 24,0 37,7 1,33 Scleroderma cit-
Aster ophora lyco- rinum 425 6,6 34,7 32,1 _
peroides 257 0,4 6,1 9.6 -
У большинства видов морфология колоний более четко выражена при культивировании на СА. По классификации Дж.Сталперса (Stalpers, 1978) у съедобных базидиомицетов наиболее часто встречается войлочный тип колоний. Войлочная колония характерна для Piptoporus betulinus, Fistulina hepatica, Laetiporus sul- . phureus, Pleurotus pueUaris, P. cystidiosus, P. dryinus, Crinipellis schevczenkovi, Lentinus edodes, Lycoperdon pyriforme, Phallus impudicus (табл. II). Ватная колония развивается у Suillus sibiricus и некоторых штаммов Agaricus bisporus. Для Amanita rubescens, Boletus edulis, Suillus luteus, Tricholomopsis rutilans, Macrolepiota nuellaris, Pluteus cervinus, Clitocybe odora, Marasmius oreades (табл. Ill, IV) характерна бархатистая колония.
Кожистая колония, обычно пигментированная, наблюдается у Panus tigrinus, Oudemansielia radicata, Marasmius alliaceus, M. scorodonius (табл. Ill). Кожистую темно-коричневую колонию образует Armillariella mellea (табл. Ill, IV). У Clitocybe clavipes развивается шелковистая колония, в центре она вишнево-коричневого цврта. Лакунозный тип колонии отмечен у Pholiota adiposa (табл. III). Мучнистая колония характерна для Flammulina velutipes (табл. IV) и Calvatia exci-puliformis (табл. Ш). Пушистая белая колония образуется у Scleroderma cit-rinum (табл. II).
Концентрическая зональность колонии наблюдается у Fistulina hepatica. Pleurotus dryinus, P. ostreatus, P. florida, Crinipellis schevczenkovi, Gerronema josserandi, Macrolepiota rhacodes, Armillariella mellea, Pholiota aurivelb (табл. II, IV) и др. Обычно концентрическая зональность наиболее четко заметна на молодой колонии. Радиальная складчатость колонии наблюдается у Macrolepiota puel-laris, Paxillus ache run tius, Leucocoprinus bresadolae, Calvatia excipuliformis, Pleurotus cervinus, Clifocybe odora (табл. II, III).
Мицелиальные тяжи хорошо выражены у Lycoperdon pyriforme, L. perlatum, Phallus impudicus, Pleurotus cystidiosus, P. conucopiae и Lentinus edodes (табл. I, II).
Окраска колонии в 1-е сутки роста обычно белая, затем у некоторых видов -приобретает желтые, серые, коричневые, красноватые тона. В отдельных случаях колония сохраняет оттенок, характерный для плодовых тел этого вида. Так, колонии серовато-сиреневого цвета наблюдаются у некоторых изолятов Lepista imda. Выраженная фиолетовая окраска типична для колонии Laccaria amethystina. Желто-оранжевая колония свойственна Laetiporus sulphureus, розовая — Anthurus archeri, черная — Lactarius necator.
Во время роста культур многих видов происходит изменение цвета реверзума или питательной среды вокруг колонии. Пигментация среды отмечена в культурах болетальных грибов: Boletus edulis, В. erythropus, SuiUus luteus, Marasmius oreades (табл. IV), Paxillus acheruntius, Xerocomus chrysentero*i. Потемнение arapa наблюдается также при культивировании Oudemansielia radicata, Armillariella mellea, Lepista luscina, Leucocoprinus bresadolae, Agaricus maskae, Macrolepiota puellaris, Clitocybe clavipes. Реверзум колонии Lactarius necator черного цвета.
У Laccaria amethystine в зоне роста агар окрашивается в интенсивный фиолетовый цвет. На поверхности колонии некоторых видов, например Gloeophyllum sepiarium, Leucocoprinus bresadolae, выделяются капли эксудата.
Некоторые виды имеют четко выраженные морфологические структуры, которые являются хорошим диагностическим признаком при идентификации культур. Так, у Armillariella mellea образуются ризоморфы. Склероции развиваются у Coprinus cinereus и Leucocoprinus bresadolae (табл. П). Pleurotus cystidiosus образует конидиальное спороношение в виде коремий с черными головками (табл. II). Коремии развиваются на зачатках плодовых тел или могут быггь равномерно распределены по всей поверхности колонии.
Для Pleurotus dryinus характерно образование оливково-коричневых хламидоспор сначала в виде темного кольца в средней части колонии (табп. II), затем — порошистой массы по всей ее поверхности.
При культивировании на других питательных средах помимо РК могут значительно меняться текстура и окраска колонии, окраска реверзума и другие показатели. Так, у Agaricus bitorquis, Crinipellis schevczenkovi, Gerronema josserandi,
Fistulina hepatica и других видов при росте на КГ А и СН не наблюдается зональность, которая четко выражена у них в процессе роста на С А. У Agaricus fissuratus зональность наблюдается только с применением CH. Poiyporus squamosus, Pipto-porus betulinus, Crinipeliis schevczenkovi, Pleurotus comucopiae, P. eryngii, Tri-cholomopsis rutilans, Sparassis crispa, Gerronema josserandi, F. velutipes, когда растут на CA, образуют обильный воздушный мицелий. При культивировании на КГА и СН у этих видов развивается в основном погруженный мицелий, а воздушный мицелий заметен в виде очень рыхлой паутинистой или мучнистой мицелиаль-ной пленки на поверхности агара. P. florida образует тяжи при росте на СН (табл. I).
