Биосенсоры: основы и приложения - Тёрнер Э.
Скачать (прямая ссылка):
catecholamines. Anal. Chem., 48, 1287-93 (1976).
46. Levich КС. Physicochemical hydrodynamics. Prentice-Hall, Englewood
Cliffs, N.J., USA, 1962.
47. Levpoldt J.K., Gough D.A. Model of a two-substrate enzyme electrode
for glucose. Anal. Chem., 56, 2896-2904 (1984). '
48. Lin P. Y. 71, Bulawa М. C" Wong P., Lin L., Scott J., Blank C. L. The
determination of catecholamines, indoleamines, metabolites, and related
activities using three micron liquid chromatography columns. J. Liq.
Chrom., 7, 509 -38 (1984).
49. Nagy G., Gerhardt G.A., Oke A.F., Rice M.E., Adams R.N., Moore R.B.,
III, Szentirmay M.N., Martin C. R. Ion exchange and transport of
neurotransmitters in nafion films on conventional and microelectrode
surfaces. J. Electroanal. Chem., 188, 85-94 (1985).
50. Niki K., Yagi Т.. Inokuchi H., Kimura K. Electrochemical behaviour of
cytochrome c3 of Desulfovibrio vulgaris, Strain Miyazaki, on the mercury
electrode. J. Am. Chem. Soc., 101, 3335-40 (1979).
51. Niki K., Kobayashi Y., Matsuda H. Determination of macroscopic
standard potentials of a molecule with a reversible "-consecutive one
electron transfer process. J. Electroanal. Chem., 178, 333-41
(1984).
52. Polta J. A., Johnson D. C. The direct electrochemical detection of
amino acids at a platinum electrode in an alkaline chromatographic
effluent. J. Liq. Chromatogr., 6, 1727-43 (1983).
53. Roston D.A.. Kissinger P. T. Series dual electrode detector for
liquid chromatography/electrochemistry. Anal. Chem., 54, 429-34 (1982).
54. Shu F. R., Wilson G. S. Rotating ring-disk electrode for surface
catalysis studies. Anal. Chem., 48, 1679-1686 (1976).
55. Sittampalam G" Wilson G. S. Surface modified electrochemical detector
for liquid chromatography. Anal. Chem., 55, 1608- 10 (1983).
56. Stamford J. A., KrukZ.L., Millar J., Wightman R.M. Striatal dopamine
uptake in the rat: In-vivo analysis by fast cyclic voltammetry. Neurosci.
Lett., 51, 133-8 (1984).
57. Stutts K.J., Kovach P.M., Kuhr W.G., Wightman R.M. Enhanced
electrochemical reversibility at heat-treated glassy carbon electrodes.
Anal. Chem., 55, 1632-4 (1983).
58. Stutts K.J., Wightman R.M. Electroanalysis of ascorbate oxidation
with electrosynthcsi/ed surface-bound mediators. Anal. Chern., 55, 1576 9
(1983).
59. Swartz D.B.. Wilson G.S. Small-volume coulometric redoxostat. Anal.
Biochem., 40, 392 400 (1971).
60. Thevenot D. R.. Sternberg R.. Coulet P. R., Laurent J., Gautheron D.
C. Enzyme collagen membrane for electrochemical determination of glucose.
Anal. Chem., 51, 96-100 (1979).
61. Wang J., Freiha B.A. Extractive preconcentration of organic compounds
at carbon paste electrode. Anal'. Chem., 56, 849-52 (1984).
62. Wang J., Hutchins L.D. Thin-layer electrochemical detector with a
glassy carbon electrode coated with a base-hydrolyzed cellulosic film.
Anal. Chem., 57, 1536-41 (1985).
63. Weber S. G. The dependence of current on flow rate in thin-layer
electrochemical detectors used in liquid chromatography. J. Electroanal.
Chem., 145, 1-7 (1983).
64. Weisshaar D. E" Kuwana T. Electrodeposition of metal micro-particles
in a polymer film on a glassy carbon electrode. J. Electroanal. Chem.,
163, 395-9 (1984).
65. Wightman R.M., Deakin M.R., Kovach P.M., Kuhr W.G.. Stutts K.J.
Methods to improve electrochemical reversibility at carbon electrodes. J.
Electrochem. Soc., 131, 1578-83 (1984).
Глава 12 Амперометрические ферментные электроды: теория и эксперимент
У. Джон Элбери, Дерек X. Крэстоп
12.1. Введение
Амперометрические ферментные электроды позволяют объединить способность
фермента к специфическому распознаванию определенных молекул-"мишеней" и
возможность прямого электромеханического преобразования скорости реакции
в электрический ток. В основу работы ферментных электродов первого
поколения, например глюкозного электрода (гл. 1, а также [15, 17]), была
положена природная ферментативная реакция
GOD
Глюкоза + О 2----> глюконолактон + Н202,
где GOD глгокозооксидаза [ЕС 1.1.3.4]. Электрод используют только для
определения концентрации либо исходного субстрата 02, либо продукта
реакции Н202. Это довольно сложное устройство с двумя мембранами; кроме
того, его сигнал зависит от концентрации 02 в окружающей среде.
Позже были разработаны системы второго поколения (гл. 15 и 16), а также
[12, 13]). Химизм протекающих в них реакций таков: фермент вступает в
окислительновосстановительную реакцию с субстратом, но затем вновь
окисляется медиатором (не кислородом), а медиатор в свою очередь
окисляется на электроде:
Глюкоза + GOD/FAD -> глюконолактон + GOD,/FADH2 GOD/FADH2 + 2М -> GOD/FAD
+ 2М' + 2Н +
На электроде: 2М' -> 2М + 2е
В этой схеме FAD представляет собой флавиновый редокс-центр
глюкозооксидазы, М-медиатор; предполагается, что М/М'-одноэлектронная
пара. В работах [12, 13] показано, что эффективными медиаторами могут
служить пары ферроцен/ферроциний, а также такие вещества, как [Fe(CN)6]3-
