Генная инженерия растений. Лабораторное руководство - Дрейпер Дж.
ISBN 5-03-001854-9
Скачать (прямая ссылка):
отличались аномальны
ми
свойствами, типичными для
регенерантов
косматого корня, и
почти
нормальным уровнем фер
тильности.
Arabidopsis thalia- Лист (С) pMON4()4 Hm На 50---60%
эксплантатов формиро
na2i> вались
стабильные резистентные
(1) к гигромицину
каллусы после
2---3
субкультивирований.
Побеги
формировались приблизи
тельно на 50%
каллусов через
4---8 нед.
Продолжение
Виды Эксплантат1) Fir-помощник и вектор Маркерный Метод
регенерации пробегов и ком
(Число сортов) ген
ментарии
Arabidopsis thalia- Лист (С) pTi3850/pAK1003 G418
Трансформацию стимулировали аце-
па25*
тосирингоном, чтобы получить
(1) G418г-
каллусы на 50---60% экс'
плантатов. 50---60% G41 ^-кал
лусов
формировали побеги через
6 нед
на среде Для регенерации.
Gossypium hirsu- Гипокотиля (С) pAL4404/pCMC 1204 Km
Растения регенерировали путем со
tum26>
матического эмбриогенеза.
(1)
Linum usitatissi- Гипокотили (С) pGV3850::pi 103 Km
Растения регенерировали через ста
mumP> дию
каллуса.
(2)
1) Эксплантаты*. Т - взращенный в теплице материал, С - стерильные
проростки, Р - размножаемые растения. КК - селекция клонов
трансформировать клеток путем роста косматых корней; ") [40]: 3) [7]; 4)
[77]; 5) [06]; 6) 149]; 7) [171; 8) [69]; 9) Аномальный фенотип
растений, регенерированных из косматых корней: складчатые листья, часто
карликовые, низкая фертильность, плагнотропный рост корня
[77]; ,0) 167]; >') [571; ,2) 165]; ,3) ]27]; и) 121]: 15) [681; 1в)
[76]; 17) [46]; 5*) [Ь\); *) 181}; 20) [78}; 2l) [551; 22) [33]; 33)
[48]; 24) [851;
иь) [71]; 2У [79]; 27) fiOj]; HPSPS - 5-enolpyruvylsftikimate-3-
phospate,
Трансформация клеток двудольных растений
189
Литература
1. Aerts М., Jacobs М., Hernalsteens J.-P., Van Montagu М., Schell I.
(1979) Induction and in vitro culture of Arabidopsis thaliana crown gall
tumours. Plant Sci. Lett. 17, 43-50.
2. Akiyoshi D. E., Klee Amasino R. М., Nester E. W., Gordon M. P.
(1984) T-DNA of Agrobacterium tumefaciens encodes an enzyme of cytokinin
biosynthesis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81, 5994-8.
3. Ammirato P. V. (1983) Embryogenesis. In: Handbook of Plant Cell
Culture, Vol. 1, pp. 82-123. Eds. Evans D. A., Sharp W. R., Ammirato P.
V., Yama-da Y. Macmillan, New York.
4. Ammirato P. V., Evans D. A., Sharp W. R-, Yamada Y. (1984) Handbook
of Plant Cell Culture, Vol. 3. Macmillan, New York.
5. An G. (1985) High efficiency transformation oi culture tobacco
cells. Plant Physiol. 79, 568-70.
6. An G. (1986) Development oi plant promoter expression vectors and
their use for analysis of differential activity oi nopaline synthase
promoter in transformed tobacco cells. Plant Physiol. 81, 86-91.
7. An G., Watson B. D., Chiang C.C. (1986) Transformation of tobacco,
tomato, potato, and Arabidopsis thaliana vising a binaiy Ti \ectoT
system. Plant Physiol. 81, 301-5.
8. Andre D., Colau D., Schell J., Van Montagu М., Hernalsteens J.
(1986) Gene tagging in plants by a T-DNA insertion mutagen that generates
APH(3')II-plant gene fusions. Mol. Gen. Genet. 204, 512-18.
9. Ashby A. М., Watson M. D., Shaw С. H. (1987) A Ti-plasmid determined
function is responsible for chemotaxis of Agrobacterium tumefaciens
towards the plant wound product acetosyringone. FEMS Microbiol. Lett. 41,
189-92.
10. Basiran N., Armitage P., Scott R. J., Draper J. (1987) Genetic
