Патологоанатомическая диагностика болезней птиц - Акулов А.В.
Скачать (прямая ссылка):
41
Упаковывают такой материал в чистые с притертой пробкой банки, обвертывают чистой бумагой, завязывают шпагатом и клеймят сургучом. Материал сопровождается соответствующей документацией.
Литература
Абуладзе К. И. и сотр. Практикум по диагностике инвазионных болезней сельскохозяйственных животных. M., 1972.
Медведев И. И. Основы латологоаиатомической техники. M., 1969.
Ветеринарное законодательство. M.. 1972. Справочник по болезням птиц. M., 1969.
Методы сохранения органов
Из наиболее характерных органов и тканей, пораженных при той нли иной болезни, готовят анатомические музейные препараты, которые в дальнейшем используют как наглядные пособия при обучении студентов и повышении квалификации специалистов.
В настоящее время для сохранения органов и тканей предложено много методов. Все они предусматривают сохранение формы и естественного цвета органов.
Мы рекомендуем готовить анатомические препараты по методу Г. В. Шора (с некоторыми изменениями). Этот метод включает предварительную обработку препаратов, фиксирование, восстановление цвета, пропитывание глицериновой смесью, помещение в стеклянную банку, а также он предусматривает заделку банки и оформление документации.
Предварительная обработка препарата. Прежде всего необходимо, чтобы музейные препараты содержали не только пораженные участки органов нли тканей, но и здоровые ткани для сравнения. Извлекая тот пли иной орган или ткань, надо сохранять их форму, не нарушать взаимосвязи с другими органами и тканями. Нужно учитывать, что чем дольше лежит труп, тем хуже сохраняется картина патологического процесса, особенно быстро изменяется цвет тканей. Предварительная обработка сводится к тому, чтобы удалить тзее ненужные для демонстрации того или иного процесса ткани. Своевременно удаляют загрязнения, отмывают кровь, так как после фиксации препаратов это сделать бывает очень трудно. Можно сначала провести незначительное по вре-
42
• ми (4—8 часов) фиксирование препарата, а затем і 111, псе загрязнения и ненужные наложения.
Фиксация. Для этой цели используют следующие inn (воду кипятят):
Смесь Кайзсрлинга: формалина 200 мл, калия азот-
I шитого (селитры) 15 г, калия уксуснокислого 30 г, in їм 1000 мл.
Смесь И. Ф. Мсльникова-Разведенкова: формалина
II Hl мл, калия хлористого 5 г, калия (натрия) уксусно-i целого 30 г, воды 1000 мл.
Смесь Пика: формалина 50 мл, соли карлсбадской искусственной) 50 г, воды 1000 мл.
Смесь Иореса: формалина-100 мл, натрия сернокис-[iho 20 г, магнезии сернокислой 20 г, соли поваренной
III г, воды 900 мл.
По нашим данным, лучше других фиксирующая жид-i ость Кайзерлипга. Перед фиксированием пока ткань не і твердела надо придать органу характерную для него фирму.
На дио посуды, в которой будет фиксироваться шатомическнй препарат, рекомендуется положитьтон-I nil слой ваты, смоченной фиксирующей жидкостью, і перху препарат также покрывают слоем гигроскопн-н ской ваты, смоченной этой же смесью.
Для фиксирования мелких углублений и выступов і шзистых оболочек и серозных покровов последние I чепластывают на пробковой пластинке, укрепляют нит-I (ми или булавками и опускают в фиксирующую смесь і таким расчетом, чтобы их поверхность не сопрнкаса-11сь с твердыми предметами. Если в органе есть кисты, їй их лучше вначале фиксировать невскрытыми, а затем \ же вырезать окошечко, удалить содержимое и заполнить кисту фиксирующей жидкостью или же ватой, смо-¦ пион фиксирующей жидкостью. Ткани, обладающие і пособностыо быстро сморщиваться, перед фиксацией І істягпвают на каком-либо твердом предмете (иа проб-
I опой пластинке, картоне, тонкой дощечке) н вместе с ним опускают в фиксирующую жидкость. Отрезки кипи мпнка (слизистой оболочкой вверх) также фиксируют, \крепив на кусочке картона или пробковой пластинке.
II тех случаях, когда надо показать толщину кишечни-i и или какие-то другие подробности и детали органа, южно фиксирующую жидкость наливать в просвет кишечника.
43
Фиксаторы медленно проникают в глубь тканей, поэтому в крупных органах делают надрезы в таких местах, где их меньше видно. В эти разрезы можно вкладывать кусочки ваты, смоченной фиксирующей жидкостью.
Фиксирующую жидкость можно вводить в орган шприцем.
Время фиксирования препарата определяется опытным путем. По данным большинства исследователей, передерживать орган илн ткань в фиксирующей жидкости не рекомендуется, чтобы не исказить цвета препарата.
В фиксирующей жидкости Кайзерлнлга тонкие пластинки ткани выдерживают 12—24 часа, а толщиной 5—6 см — 4—6 дней, до равномерного побуреиия ткани как снаружи, так н внутри уплотнения органа. Целые трупы мелких и средних птиц следует выдерживать в фиксаторе неделю или несколько больше. При слишком длительной фиксации ткань теряет свойство восстанавливать цвет при обработке спиртом. Фиксирующую жидкость для фиксации препарата можно использовать 2—3 раза, предварительно профильтровав ее через вату.
Восстановление цвета препарата. Зафиксированные препараты для восстановления цвета кладут в 95%-ный зтнловый спирт (можно применять бесцветный перегнанный денатурированный спирт) на 2—12 часов, в зависимости от величины и характера ткани. Большие по размеру органы можно оставить в спирте на сутки, что делается крайне редко. Обычно естественный цвет восстанавливается легко, но при этом бывает несколько матовый оттенок, исчезающий при перенесении препарата в глицернно-солевую смесь. Если препарат жирный, то его для растворения жира ненадолго покрывают тряпочкой, смоченной сниртом. Как только орган принял естественную окраску, его извлекают из спирта, иначе может произойти обесцвечивание препарата.
