Научная литература
booksshare.net -> Добавить материал -> Медицина -> Шалимов С.А. -> "Руководство по экспериментальной хирургии" -> 42

Руководство по экспериментальной хирургии - Шалимов С.А.

Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевич Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии — М.: Медицина , 1989. — 272 c.
Скачать (прямая ссылка): rukovodstvopoexperimentalnoy1989.djvu
Предыдущая << 1 .. 36 37 38 39 40 41 < 42 > 43 44 45 46 47 48 .. 117 >> Следующая

101
Рис. 42. Тотальная рентгенограмма собаки по М. С. Овощникову.
а — в положении на боку; б — на спине. Артерии инъецированы массой Гауха.
НИ



Рис. 43. Общий вид устройства для лимфографии.
Большой объем информации о состоянии лимфатической системы можно получить, используя рентгенологический метод. Известны два способа изучения лимфатической системы: непрямая и прямая лимфография.
Непрямая лимфография разработана в нашей стране А. С. Золотухиным и М. Г. Привесом (1927). Она основана на выраженной способности лимфатических капилляров всасывать из тканей водорастворимые и коллоидные вещества, в том числе поглощающие рентгеновские лучи. Наилучшие результаты дают колларгол и торотраст, но, к сожалению, они не применимы у человека и потому остались в экспериментальной медицине [Лукьянченко Б. Я., 1966]. Исследование осуществляют путем введения 3—4 мл вещества непосредственно в ткань, а затем делают серийные рентгеновские снимки начиная с 30-й минуты после введения.
A. Carvalho и соавт. (1931) и P. Sergent (1932), Д. А. Жданов и соавт. (1938) в клинике получили рентгенограммы лимфатических сосудов после введения рентгеноконтрастного вещества непосредственно в лимфатический узел.
Большое значение имеет все же метод прямой лимфографии. Методика ее проведения: в первый межпальцевый промежуток на стопе или в третий на кисти вводят под кожу 1 мл 0,25 % раствора Эванс синий на 0,5—1 % растворе новокаина. Отступив от места введения красящего раствора на 5—6 см, под новокаиновой анестезией разрезом длиной 2—3 см рассекают
103
кожу и выделяют окрашенный в синий цвет лимфатический сосуд. Его захватывают глазным пинцетом, проксимальнее пинцета вкалывают в сосуд иглу, соединенную с двадцатиграммовым шприцем «Рекорд», содержащим рентгеноконтрастное вещество (верографин, диодон и т. д.). Перед введением в игле создают некоторое давление, чтобы препарат по каплям вытекал в момент введения. Это облегчает контроль правильности введения иглы. Водорастворимые вещества вводят со скоростью 1 мл/мин, масляные — 1 мл/15 мин.
Основным условием успеха прямой лимфографии является неподвижность иглы в процессе введения препарата. Поэтому между иглой и шприцем делают вставку в виде гибкого катетера, а подачу поршня лучше всего осуществлять механически, закрепив шприц в специальном станке. Рентгенограммы делают через 15—20 мин после введения препарата и по мере необходимости через 24—48 ч. Этим же методом в лимфатические сосуды можно ввести радиоактивные препараты (для получения скенограмм) и любые фармакологические вещества.
Интраорганную сеть лимфатических капилляров и сосудов также выявляют путем введения в ткань специальных масс. Одним из эффективных и технически простых является метод индикации, предложенный А. А. Сушко (1966). Вначале 0,5 г оранжевого кадмия тщательно, растирают в фарфоровой ступке с 1—2 мл скипидара, добавляют 25 мл хлороформа, 25 мл эфира и фильтруют через толстый слой ваты. Из пипетки Пастера путем оттягивания ее кончика в пламени горелки готовят тонкую канюлю и под углом 30—45° вкалывают ее в ткань органа на глубину до 0,5 см. Через резиновую трубку-переходник присоединяют к канюле шприц и медленно вводят массу. Во время наливки канюля должна быть неподвижна. Если масса задерживается в близлежащих капиллярах, ее можно продвинуть, слегка массируя ткань влажным тампоном или черенком скальпеля. Желательно, чтобы масса и орган были подогреты до температуры + 37°С. Д. А. Жданов рекомендует проводить инъекцию до тех пор, пока вокруг канюли не образуется экстравазат. Если экстравазат возникает в самом начале инъекции, введение массы следует прекратить и ввести канюлю на другом участке.
Инъецированный орган фиксируют 7 дней в смеси спирта и глицерина, взятых в соотношении 1 : 1, рассекают на фрагменты толщиной до 1 см, обезвоживают в спиртах восходящей крепости и на 1—3 дня помещают в смесь, состоящую из 500 мл спирта и 200 г прокаленного медного купороса, периодически взбалтывая ее. Вступая в реакцию с оранжевым кадмием, купорос выявляет даже ничтожные количества его в тканях. Обработанные таким образом срезы промывают в 96° и 100° спирте, просветляют в метиловом эфире салициловой кислоты или ксилоле и заключают в бальзам. Д. А. Жданов (1955) рекомендует инъецированный орган фиксировать в 10—12% растворе фор-
104
малина, затем рассекать его на фрагменты, 6—12 ч отбеливать в 3 % растворе перекиси водорода и просветлять в 65 % и 100 % глицерине.
Для детального исследования в хроническом эксперименте состава лимфы у собак канюлируют грудной проток. С этой целью у подопытного животного, находящегося в состоянии наркоза, разрезом слева по наружному краю грудиноключичнососцевидной мышцы вскрывают влагалище сосудисто-нервного пучка и выделяют яремную вену, оттягивают ее кнаружи и вверх. Рыхлую клетчатку между пищеводом и венозным углом отслаивают по направлению к пищеводу и поперечному отростку Ть При этом становится видимой концевая ампула грудного протока. Тупым путем выделяют впадающий в нее шейный лимфатический ствол, на 3—4 см дистальнее ампулы его перевязывают, канюлируют, продвигая катетер в грудной проток, фиксируют катетер в протоке, выводят его на кожу, для амортизации делая в подкожной клетчатке один спиральный виток, и рану зашивают наглухо. Катетер можно держать до 18 сут [Миннебаев М. М. и др., 1982].
Предыдущая << 1 .. 36 37 38 39 40 41 < 42 > 43 44 45 46 47 48 .. 117 >> Следующая

Реклама

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed

Есть, чем поделиться? Отправьте
материал
нам
Авторские права © 2009 BooksShare.
Все права защищены.
Rambler's Top100

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed