Научная литература
booksshare.net -> Добавить материал -> Медицина -> Шалимов С.А. -> "Руководство по экспериментальной хирургии" -> 37

Руководство по экспериментальной хирургии - Шалимов С.А.

Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевич Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии — М.: Медицина , 1989. — 272 c.
Скачать (прямая ссылка): rukovodstvopoexperimentalnoy1989.djvu
Предыдущая << 1 .. 31 32 33 34 35 36 < 37 > 38 39 40 41 42 43 .. 117 >> Следующая

Инъекционный метод, включаюший изготовление коррозионных препаратов, известен еще с XVI века, когда итальянский профессор Беренгариус Капензис, изучая сосуды почки, наполнял их водой. За истекшее время накоплен громадный фактический материал, предложено множество разнообразных инъекционных масс, отработаны основные приемы проведения инъекции, но можно с уверенностью сказать, что этот метод себя еще не исчерпал и в ряде случаев позволяет получить принципиально новые сведения, которые не могут быть добыты другими способами.
Вместе с тем для практической работы совсем не обязательно стремиться к использованию возможно большего числа предложенных инъекционных масс. Большинство из них дают сход-
87
ные результаты, и качество препаратов главным образом зависит от опыта экспериментатора. Поэтому следует хорошо освоить методику применения 2—3 масс и затем уже постоянно использовать именно их в повседневной практике. Однородность полученного в результате материала повысит и достоверность наблюдений, ибо итоги эксперимента будут полностью сопоставимы.
Инъекция сосудов лучше всего удается на трупах только что забитых животных. После введения животных в наркоз перед забоем желательно их несколько обескровить, а после эвтаназии сосуды исследуемого органа нужно отмыть от крови каким-либо солевым раствором до появления неокрашенной жидкости из магистральной вены. Правда, некоторые авторы считают, что предварительная отмывка сосудистого русла может ухудшить качество инъекции.
Отмывание сосудистого русла и последующую инъекцию лучше всего проводить шприцем типа «Рекорд» с металлическим поршнем без резиновых или пластмассовых уплотнителей. Опыт показывает, что применение различных аппаратов (с измерителями давления или без них) только создает дополнительные трудности, повышает вероятность образования экстравазатов, но отнюдь не улучшает качество инъекции. По возможности следует поддерживать температуру органа, инъекционной массы и инструментария в пределах +38°—Ь40°С.
Введение массы в артерии осуществляют по току крови» канюлируя магистральный сосуд исследуемого органа. Вены внутренних органов, не имеющие клапанов, заполняют либо противотоком, канюлируя наиболее крупный сосуд, либо выдавливая массу через артериальное русло. Последний способ допустим лишь для красителей, полностью растворяющихся в жидкости, иначе возникновение экстравазатов и порча препарата неизбежны.
Вены конечностей, снабженные клапанами, заполняют, вводя массу в губчатое вещество пяточной, большеберцовой или бедренной кости. Для этого пригодны только массы, не содержащие взвешенных частиц и латекс.
Практика работы с инъекционными массами показывает, что лучшие результаты и наиболее тонкую наливку дает инъекция черной тушью по способу Б. В. Огнева (1928) в модификации Н. А. Джавахишвили и М. Э. Комахидзе (1967) и массой Герота по способу А. Т. Акиловой (1944) или в модификации X. X. Камилова (1970).
Способ Б. В. Огнева: 1 г черной туши в палочках растирают в 150 мл горячей воды, фильтруют и через стеклянную канюлю с резиновой трубкой на конце вводят в артерию. Инъекцию прекращают при появлении туши в венах. Затем в шприц набирают 75 мл горячего 2 % раствора той же туши и проводят дополнительную наливку, контрастируя при этом сосуды среднего калибра и выталкивая более слабый раствор туши в капил-
88
ляры и венулы. Крупные артерии заполняют 3 % раствором туши. Инъецированный орган в течение 7 дней фиксируют в формалине, рассекают на фрагменты, обезвоживают в спиртах восходящей концентрации и заключают в бальзам.
По методу Н. А. Джавахишвили и М. Э. Комахидзе сначала 100 г пищевого или 120 г технического желатина растворяют в 1 л воды (добавляя в технический желатин яичный белок для просветления), фильтруют его в горячем виде через 8—10 слоев марли и смешивают в равных количествах с 10 % раствором цитрата натрия и обычной морозоустойчивой тушью (1:1:1). Изолированные органы инъецируют через артерию до появления равномерной черной окраски на поверхности, фиксируют не менее 7 дней в 10 % растворе нейтрального формалина, рассекают на отдельные фрагменты толщиной до 80 мкм, обезвоживают в спиртах восходящей крепости, просветляют в ксилоле или метиловом эфире салициловой кислоты и заключают в бальзам. Выявляются все компоненты сосудистой системы, включая капилляры.
Метод А. Т. Акиловой (1944, 1959) позволяет получить весьма демонстративные препараты, на которых четко видны все звенья внутриорганной артериовенозной системы. Масса
А. Т. Акиловой, представляющая собой видоизмененную массу Герота, в отличие от нее может храниться в течение 2 лет, что существенно упрощает работу. Для приготовления массы 30— 60 г масляной краски (прусская, или парижская синяя) тщательно, при постоянном взбалтывании, растирают в 100 мл хлороформа и 1—2 дня дают ей созреть в банке с притертой пробкой.
Набирают в шприц окрашенную в голубой цвет надосадоч-ную жидкость и вводят ее в магистральную артерию исследуемого органа. Накрывают его влажной марлей, 3—5 дней выдерживают на воздухе для испарения хлороформа, до 3 дней фиксируют в 5—10% растворе формалина, промывают в проточной воде, на замораживающем микротоме рассекают на пластины толщиной до 50 мкм, 1—2 дня отбеливают в 2 % растворе перекиси водорода, просветляют в 90 % растворе глицерина и заключают в глицерин.
Предыдущая << 1 .. 31 32 33 34 35 36 < 37 > 38 39 40 41 42 43 .. 117 >> Следующая

Реклама

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed

Есть, чем поделиться? Отправьте
материал
нам
Авторские права © 2009 BooksShare.
Все права защищены.
Rambler's Top100

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed