Инфекции в акушерстве и гинекологии - Макаров О.В.
ISBN 5-98322-263-5
Скачать (прямая ссылка):
Б. Культуральный метод: 1) отсутствие роста лактобацилл или их количество минимальное (менее 4 lg КОЕ/мл); 2) рост факультативно-анаэробных УПМ, чаще какого-либо одного вида, в высоком титре (5—7 lg КОЕ/мл).
Атрофический кольпит
А. Микроскопия мазка, окрашенного по Граму: 1) в зависимости от выраженности атрофии слизистой оболочки вагинальный эпителий представлен промежуточными и парабазальными клетками; 2) количество лейкоцитов чаще в пределах 10 в поле зрения; 3) микрофлора «скудная», практически отсутствует, могут встречаться единичные лактоморфотипы или морфотипы УПМ в редких полях зрения.
Б. Культуральный метод: 1) низкая общая микробная обсемененность вагинального отделяемого (2—4 lg КОЕ/мл); 2) низкий титр как лактобацилл, так и УПМ.
1.3.3. Микроэкология и показатели гуморального иммунитета влагалища пациенток с неспецифическими воспалительными заболеваниями гениталий
В последние годы среди инфекционно-воспалительных заболеваний женских половых органов все большее значение приобретают воспалительные процессы, этиологическими агентами которых служат условно-патогенные бактерии и грибы, являющиеся составной частью нормальной микрофлоры. Так, частота выявления вагинальных дисбиозов и неспецифических вагинитов в настоящее время достигает 30% в общей структуре заболеваний женских половых органов (Алешкин В.А., Султанова СВ. и др., 2000; Минкина Г.Н., Ману-хин И.Б., Франк Г.А., 2001). Отсутствие специфической картины воспаления, вялое, часто бессимптомное его течение осложняют диагностику этих заболеваний, что может способствовать хронизации процесса и развитию осложнений.
Традиционным способом микробиологического исследования в гинекологии является обнаружение условно-патогенной микрофлоры в отделяемом. Вместе с тем, образование приэпителиальной биопленки, соотношение формирующих ее индигенных и условно-патогенных микроорганизмов определяет микроэкологический статус биотопа, развитие и длительность течения воспалительного процесса (Chow A.W., Percikal-Smith R., Bartlet K.H., 1986). KP влагалища определяется также состоянием местного гуморального иммунитета (Воропаева Е.А., Афанасьев С.С. и др., 2005). В связи с этим важное практическое значение приобретает комплексное изучение микроэкологии пристеночной и просветной зон влагалища в сочетании с определением гуморальных иммунологических показателей.
Е.А.Воропаевой и соавт. (2005) на базе Клинико-диагностическго центра МНИИЭМ им. Г.Н.Габричевского МЗ РФ проведено комплексное обследование по цитологическим, микробиологическим и иммунологическим показателям 90 женщин, страдающих неспецифическими воспалительными заболеваниями половых путей, и 30 клинически здоровых женщин контрольной группы. Из исследования были исключены больные с наличием урогенитальных ИППП. Цитологическое исследование (микроскопия мазков) включало определение наличия в секрете влагалища грамположительной и грамотрицатель-
42 Глава I
ной флоры, лейкоцитов, моноцитов, макрофагов, состояния эпителиальных клеток (Кира Е.Ф., 1994; Дмитриев ГЛ., 2003).
Микробиологическое исследование включало определение качественного и количественного состава микробиоценозов просветной и пристеночной областей влагалища. Для оценки состояния просветной микрофлоры забор материала производили из заднего свода влагалища стерильным ватным тампоном, а для оценки состояния пристеночной микрофлоры — с помощью цер-викальных цитощеток, позволяющих получить при соскобе со слизистой оболочки слой поверхностных эпителиальных клеток с адгезированными на их поверхности микроорганизмами. Полученный материал помещали в коллекторы с транспортной средой Amies с активированным углем. Согласно экспериментальным данным количество исследуемого материала при заборе тампоном составляло приблизительно 0,5 г, цитологической щеткой — 0,2 г. Материал с тампонов и цитощеток тщательно суспендировали в пробирках с предварительно редуцированным бульоном Шеллера в соотношении 1:10. Далее из девяти последовательных 10-кратных разведений проводили высев секторами на общие и дифференциально-диагностические питательные среды. Посевы инкубировали в термостате при температуре 37°С в течение 24—96 ч в аэробных или анаэробных условиях в зависимости от исследуемой группы микроорганизмов. Анаэробиоз создавали в анаэростатах с помощью газогенерирующих пакетов. Под стереоскопическим микроскопом подсчитывали число различных видов колоний в каждом секторе и рассчитывали количество микроорганизмов в lg КОЕ/г. Родовую и видовую идентификацию культур осуществляли на основании изучения морфологических, культуральных и биохимических свойств выделенных микроорганизмов.
Иммунологические исследования включали определение концентрации в секрете слизистой оболочки влагалища IgM, IgA, IgG, секреторного IgA (slgA) и свободного секреторного компонента (sc). После взятия материала из влагалища для микробиологического исследования производили смывы со стенок влагалища 5 мл 6% раствора полиглюкина. Пробы замораживали в морозильной камере при температуре —40°С. Оценку показателей проводили по стандартной методике Манчини (Mancini G., Carbonara A.O., HeremansJ.E, 1965).
