Анестезия и педиатрия - Джордж А.Г.
ISBN 5-225-03821-2
Скачать (прямая ссылка):
При "переломе" лихорадки пороги быстро возвращаются к нормальным значениям, что является следствием быстрого истощения эндогенных пирогеиов. Однако температура внутренней среды, неспособная меняться быстро, остается повышенной. Несоответствие между гипертермич-ной внутренней средой и теперь почти нормальными порогами инициирует активную вазодила-тацию и потеиие.
Лихорадка является хорошо сохраняемой регуляторной реакцией. Лихорадка в ответ на инфекцию развивается не только у всех млекопитающих и птиц, ио даже рептилии и рыбы используют поведенческую регуляцию для повышения температуры внутренней средм в ответ на пиро-геииую стимуляцию. Существуют серьезные признаки того, что лихорадка есть адаптивная реакция, значительно облегчающая реакцию на инфекцию [361—365\. ПреДомииаитный эффект представляется периферической стимуляцией иммунной функции [326, 327\. Лечение млекопитающих препаратами-антипиретиками снижает резистентность к тестовым инфекциям. С этой точки зрения сегодняшняя практика интенсив-
ного лечения лихорадки может быть ие вполне обоснованной.
Несмотря иа то что многие хирургические больные имеют основания для лихорадки В Пред-и послеоперационном периоде, во время наркоза фебрильная температура отмечается редко. Это обусловлено применением летучих анестетиков и опиоидов, ингибирующих лихорадку [366—369[. В противоположность этому эпилуральное обезболивание не влияет на лихорадку [370\.
Г.'-
Температурные нарушения в периоперанион-ном периоде всеохватывающи. Некоторые из них являются результатом регуляторных нарушений, другие — экстремального стрессового воздействия окружающей среды либо избыточной метаболической теплопродукции. Так нлн иначе, но все онн потенциально вредны. Понимание этиологии этих нарушений облегчит выбор соответствующего терапевтического воздействия и сведет к минимуму вероятность серьезных осложнений.
1. Wingard DW: A stressful situation [Editorial]. Anesth Analg 59:321, 1980
2. Denborough MA, Lovell RRH: Anaesthetic deaths in a family [letter). Lancet 2:45, I960
3. Ludvigscn J: "Musculardegeneration" in hogs (preliminary report), p. 602. 15th International Veterinary Congress, Stockholm, 1953
4. Nelson ТЕ, Jones EW, Henrickson RL et al: Porcine malignant hyperthermia: observations on the occurrence of pale, soft, exudative musculature among susceptible pigs. Am J Vet Res 35:347, 1974
5. Kalow W, Britt BA, Terreau M E, Haist C: Metabolic error of muscle metabolism after recovery from malignant hyperthermia. Lancet 31:895, 1970
6. Bntt BA, Kalow W: Malignant hyperthermia: aetiology unknown. Can Anaesth Soc J 17:3)6, 1970
7. Harrison GG: Control of the malignant hyperpyrexic syndrome in MHS swine by dantrolene sodium. Br J Anaesth 47:62, 1975
8. Sessler Dl: Malignant hyperthermia, J Pediatr 109:9, 1986
9. Nelson ТЕ, Flewellen EH: The malignant hyperthermia syndrome (current concepts). N Eng] J Med 309:416,1983
10. MacLenrian DH, Phillips MS: Malignant hyperthermia. Science 256:789, 1992
11. Rosenberg H, Fletcher ІЕ: An update on the Malignant hypesthermia syndrome. Ann Acad Med Singapore 23:84,
|2. Ruitenbeek W. Verburg P, Janssen AJ, Stadhoudeis AM, Sengers RC: In vivo induced malignant hyperthermia in pigs. Metabolism of skeletal muscle mitochondria. Acta Anaesthesiol Scand 28:9, 1984
13. Moulds RPW, Denborough MA: Identification of susceptibility to malignant hyperpyrexia. Br Med J 2:245, 1974
14. Fletcher JE, Rosenbeig H, Hilf M: Electrophoresis of soluble muscle protein from malignant hyperthermia suscep-tibles. Anesthesiology 61Л279, 1984
Нарушения температуры 101
15. Matjanen LA, Denborough MA: Electrophoretic analysis of proteins in malignant hyperpyrexia susceptible skeletal muscle. Int J Biochem 16:919. 1984
16. Bennett D, Cain PA, Ellis FR et al: Calcium and magnesium contents of malignant hyperpyrexia susceptible human muscle. Br J Anaesth 49:979, 1977
17. Nelson ТЕ, Belt MW, Kennamer DL, Winsett OE: Studies on the Ca+2 transport function of sarcoplasmic reticulum isolated from human malignant hyperthermia skeletal muscle, abstracted. Anesthesiology 65:A243, 1986
18. Gronert GA, Heffron JJA, Taylor SR: Skeletal muscle sarcoplasmic reticulum in porcine malignant hyperthermia. Eur J Pharmacol 58:179, 1979
19. Moulds RFW: The site of the abnormality in MH muscle: a comparison of M H muscle and denervated muscle, p.
49. In Aldrete JA, Britt BA (eds): Malignant Hyperthermia. Grune & Stratton, New York, 1978
20. Lorkin PA, Lehmann H: Malignant hyperthermia in pigs: a search for abnormalities in Cir* binding proteins, FEBS Lett 153:81 1983
21. Green A, Mitchell G. Heffron JM: Effects of temperature, adenosine triphosphate and magnesium concentrations on the contraction of actomyosin isolated from halothane-sensitive and -insensitive German Landrace pigs, Br J Anaesth 52:319, 1980
