Общая аллергология - Адо А.Д.
Скачать (прямая ссылка):
J.........I ....I. 1
t f I Ах М Ах
*
Алл
Ах
1 мин
повышает чувствительность бронхиальной гладкомышечной ткани но только к специфическому аллергену, по и к гистамину.
Это дало основание считать, что если такое повышение чувствительности наступает в процессе сенсибилизации, то, возможно, при помощи пассивной сенсибилизации можно будет его обнаружить.
Опыты по пассивной сенсибилизации противобелковыми антителами кролика проводились па отрезках подвздошной кишки морской свинки. Исследовали чувствительность подвздошной кишки к рабочим дозам гистамина и ацотилхолииа до и после пассивной сенсибилизации. Как показали полученные результаты, чувствительность отрезков подвздошной кишки к гистамину и ацетилхолину поело пассивной сенсибилизации не изменялась. Можно сделать вывод, что либо блокада адренергических рецепторов (выражающаяся в повышении чувствительности гдадкомышечиых органов к биологически активным веществам) предшествует сенсибилизации, либо она проявляется лишь в условиях целостного организма.
Таким образом, полученные данные свидетельствуют об усиливающем анафилактическую реакцию действии блокады (3-адренергнческих рецепторов, которое проявляется, одпако, лишь в условиях целостного организма, возможно, за счет снятия действия эндогенных стимуляторов (3-адро-пергичсских рецепторов.
ДЕСЕНСИБИЛИЗАЦИЯ ИЗОЛИРОВАННЫХ ГЛАДКОМЫШЕЧИЫХ ОРГАНОВ
Сложный вопрос о десенсибилизации тканей кишечника к белковым антигенам не является достаточно изученным. Ряд исследователей (Н. Ромадановская, 1929; Schulz, 1910; Dale, 1913; Kendall, Varney, 1927; Ilalpern et al., 1961, и др.) считают, что после анафилактической контрактуры изолированные гладкомышечные органы становятся ареак-тивными к повторному добавлению антигена вследствие наступления десенсибилизации. Другие авторы (Jumoto, 1937) отмечают возможность повторной анафилактической реакции при воздействии антигена на изолированные гладкомышечные органы сенсибилизированных животных. Jumoto при этом указывает, что для полной десенсибилизации изолированных органов необходимо выдержать их в растворе Тиродо с антигеном в течение 10—15 мип, после чего они становятся ароактивными к повторному воздействию антигена. В опытах II. И. Ковязина (1948) десенсибилизация паступала только после 30-мииутпого пребывания кишки в растворе антигена. Однако если отрезок кишки после этого перенести в свежий раствор Тиродо без антигена и оставить в ном па 172-—2 ч, то десенсибилизация постепенно проходит и кишечник вновь приобретает способность отвечать вырая^еиной реакцией на антиген. Для изучения возможности десенсибилизации топкого кишечника после общей анафилактической реакции Н. II. Ковязип ставил опыты иа кроликах после 6—7-й сенсибилизирующей инъекции. На внутривенное введение разрешающей дозы антигена кролики реагировали резко выраженной картиной анафилактического шока: одышкой, самопроизвольным отделением кала и мочи, судорогами, коллапсом. Несмотря па это, изолированная кишка животных сохраняла способность отвечать выраясенной реакцией иа добавление антигена в раствор Тироде. Таким образом, на высоте максимальной анафилактической зрелости кишечника не удается получить стойкой десенсибилизации его после однократного разрешающего введения антигена. Кроме того, реактивность изолированного кишечника иа антиген сохраняется у сенси-
билизпрованпых кроликов и после перенесенного анафилактического шока. Многочисленными исследованиями (М. И. Ундрицов, 1947; И. В. Данилов, 1950; JL М. Ишимова, 1959, и др.) установлено, что сенсибилизированные гладкомышечные органы (кишка, матка) различных животных многократно отвечают сильными сокращениями при добавлении антигена к питательной среде. К этому выводу пришел и Liacopoulos (1961). По его данным, введение антигена в небольших дозах неодшшратпо вызывает анафилактическую реакцию отрезка кишки.
Введение в экспериментальную практику метода пассивной сенсибилизации изолированных гладкомышечных оргапов позволило получить количественные данные о зависимости десенсибилизации от концентрации сенсибилизирующих антител и антигена, используемого для воспроизведения анафилактической реакции (Halpern et al., 1960). Опыты были проведены на отрезках тонкого кишечника морской свинки, сенсибилизированных пассивно различным количеством кроличьих антител (от 2,5 до 20 мг по азоту на 1 мл) к овальбумину. В качестве тестирующей дозы антигена использовали его концентрацию, превышающую таковую для воспроизведения максимального сокращения органа при первом добавлении в условиях максимальной сенсибилизации кишечника. Коидициоии-рующую дозу антигена (нервое добавление) изменяли от пороговой до максимальной. Степень десенсибилизации учитывали по величине сокращения мышцы в ответ иа тестирующую дозу антигена. Продолжительность контакта кондиционирующей дозы антигена с тканыо сохраняли постоянной (3 мни). Степень десенсибилизации кишечника, выявляемая тестирующей дозой антигена, была прямо пропорциональна величипо кондиционирующей дозы и становилась полной при использовании максимальной кондиционирующей дозы антигена в условиях максимальной сенсибилизации ткани (20 мг антител по азоту иа 1 мл). Если орган сенсибилизировали меньшим количеством антител, то полная десенсибилизация развивалась при субмаксимальных кондиционирующих дозах. Было исследовано также влияние продолжительности контакта кондиционирующей пороговой дозы антигена с тканыо кишки на развитие десенсибилизации при различной концентрации антител (от 2,5 до 20 мг по азоту иа 1 мл), используемых для сенсибилизации. Оказалось, что даже при максимальной сенсибилизации кишечника пороговая доза антигена способна вызывать полную десенсибилизацию при условии достаточно продолжительного периода контакта антигена с органом (до 240 мин). Вообще же продолжительность контакта кондиционирующей дозы антигена с кишечником, необходимая для полной десенсибилизации, была обратно пропорциональна концентрации сенсибилизирующих антител. Таким образом, было установлено, что степень развития десенсибилизации определяется величиной кондиционирующей дозы антигена, концентрацией используемых для сенсибилизации антител и продолжительностью контакта антигена с гладкомышечным органом.
